Rev. Fac. Agron. (LUZ) 1995, 12: 1 - 13

Control químico in vitro y en umbráculo del hongo causante de la pudrición blanca.1

Chemical control in vitro and greenhouse of the fungus caused white rot.

Amado Rondón 2; Yadira Flores 3; Enio Soto 2;Yinni Mujica 3

1 Proyecto Nº F-132 subvencionado por el CONICIT.

2 FONAIAP-CENIAP, Aptado. 4653, Maracay, Aragua, Venezuela.
3 Fundación La Salle, Campus Cojedes, San Carlos, Cojedes, Venezuela.

Recibido el 28-09-94 Aceptado el 16-11-94

Resumen

La pudrición blanca causada por el hongo Sclerotium rolfsii Sacc. es una enfermedad importante en el Estado Cojedes, porque ocasiona pérdidas económicas en muchos cultivos, a saber: tomate, ñame, pimentón, soya, girasol, batata, caraota, tabaco y ajonjolí. Con miras a establecer un combate efectivo del hongo, enmarcado dentro del control integrado, se realizó esta investigación partiendo de aislamientos de plantas de girasol (Helianthus annuus L.) y de tomate (Lycopersicon esculentum L.), teniendo como objetivo probar in vitro y en umbráculo la efectividad de los fungicidas Vinclozolina (Ronilan), Iprodione (Rovral), Metalaxil (Ridomil), Clorotalonil (Daconil), PCNB (Terraclor), Oxicloruro de cobre (Cobrex), Captan (Orthocide-50), Benomil (Benlate), Carboxin + Thiram (Vitavax-200), Carbendazim (Derosal), Kasugamicina (Kasumin) y Tiabendazol (Tecto). Se utilizaron cinco concentraciones de los productos y se realizaron mediciones del crecimiento micelial y producción de esclerocios del hongo durante 21 días. Los resultados del análisis estadístico mostraron que los productos más efectivos fueron Vitavax y PCNB, pues ambos inhibieron el crecimiento micelial así como la formación de esclerocios a bajas concentraciones

Palabras clave: Sclerotium rolfsii, fungicidas, pudrición blanca.

Abstract

The white rot caused by the fungus Sclerotium rolfsii Sacc. is an important disease in Cojedes state. The fungus is responsable of economic losses in many crops such as: tomato, tobacco, yam, bell pepper, soybean, sunflower, sweet potato, black bean and sesame. In order to stablish an effective control of the fungus, related with the integrated control, this research was carry out using isolates from sunflower (Helianthus annuus L), and tomato (Lycopersicon esculentum Mill.). Having as objetive to test in vitro and greenhouse conditions the effectiveness of the fungicides: Vinclozolina (Ronilan), Iprodione (Rovral), Metalaxil (Ridomil), Clorotalonil (Daconil), PCNB (Terraclor), Oxicloruro de cobre (Cobrex), Captan (Orthocide-50), Benomil (Benlate), Carboxin + Thiram (Vitavax-200), Carbendazim (Derosal), Kasugamicina (Kasumin) and Tiabendazol (Tecto). Five concentrations of the products were used and measurements of the mycelial growth and sclerotia production during 21 days were realized. The results statistical analysis showed that the most effective products were Vitavax and PCNB, because both inhibited the mycelial growth and sclerotia formation at low concentrations.

Key words: Sclerotium rolfsii, fungicides, white rot.

Introducción

La pudrición blanca causada por el hongo Sclerotium rolfsii Sacc. es una enfermedad que ocasiona pérdidas en muchos cultivos de importancia económica en regiones tropicales y subtropicales del mundo, infectando una gama de suelos en cualquier época del año. Durante el período 1988-1993, el hongo fue observado en diversas zonas agrícolas del Estado Cojedes, atacando plantas de: tomate (Lycopersicon esculentum Mill..), ñame (Discorea alata L.), pimentón (Capsicum annuum L.), soya (Glycine max (L.) Merr.), girasol (Helianthus annuus L.), batata (Ipomoea batatas (L.) Lam.), caraota (Phaseolus vulgaris L.), tabaco (Nicotiana tabacum L.) y ajonjolí (Sesamum indicum L.). El hongo posee estructuras fúngicas representadas por micelio y esclerocios, siendo estos últimos responsables de la supervivencia en condiciones ambientales adversas y de hecho constituyen estructuras más difíciles de controlar. Además, el organismo en contacto con el huésped secreta ácido oxálico, enzimas celulolíticas, pectinolíticas y fosforilasa (3), las cuales a nivel del suelo degradan el tejido permitiendo la infección de la planta.

El objetivo del trabajo fue demostrar, en condiciones de laboratorio y umbráculo, la efectividad de algunos fungicidas sobre el crecimiento micelial y la producción de esclerocios del hongo S. rolfsii, agente causal de la pudrición blanca.

Materiales y métodos

Aislamiento.

El aislamiento del hongo se realizó de tallos y raíces necrosadas de plantas de girasol y tomate, desinfectando pedazitos de tejidos con hipoclorito de sodio al 1.5% por 3 min, sembrando en cajas Petri conteniendo papa-dextrosa-agar (PDA) e incubando a 28 oC durante 5 a 7 días.

Fase de laboratorio.

Los fungicidas probados se presentan en el Cuadro 1. La efectividad de esos productos se evidenció mediante dos experimentos, uno de crecimiento con mediciones diarias durante una semana y otro de producción de esclerocios medidos cada 7 días hasta los 21, usando la técnica de Palazón y el método de dilución en plato de agar (4). Esta metodología consistió en pesar 1 g del principio activo de cada fungicida, disolviéndolo en 5 ml de acetona (95%), completando el volumen de 100 ml con agua destilada estéril, lográndose una suspensión de 10.000 ppm, para cada fungicida. A partir de esta concentración patrón se hicieron diluciones en serie, tomando 1ml vertiéndolo en un tubo de ensayo que previamente contenía 9ml de agua destilada estéril, así se obtuvieron concentraciones de 1.000, 100, 10 y 1 ppm, respectivamente; simultáneamente se prepararon los testigos con acetona y agua destilada estéril.

Cuadro 1. Fungicidas (*) probados in vitro para inhibir la germinación y la producción de esclerocios del hongo Sclerotium rolfsii Sacc.

Nº Productos

Composición Química

1. Vinclozolina (Ronilan 50 w)

3-(3.5-diclorofenil)-5-etenilo-5-metil-2.4oxazolidinediona.

2. Iprodione (Rovral 50 w)

3-(3.5-diclorofenil)-N-(isopropil)-2.4-dióxido-1-imidazolinecarboximida.

3. Metalaxil (Ridomil 35 w)

N-(2.6-dimetil fenil)-N-(metoxiacetil)-alanina-metil éster

4. Clorotalonil (Daconil 50 w)

Tetracloro-iso-ftalonitrilo.

5. PCNB (Terraclor 75 w)

Pentacloronitrobenceno.

6. Oxicloruro de cobre (Cobrex 50 w)

Polvo mojable, cobre metálico superior a 50%

7. Captan (Orthocide 50 w)

N-triclorometil-tio-4-ciclohexeno-1.2-dicarboximida.

8. Benomil (Benlate 50 w)

Metil-1-(butil-carbamoil) benzimidazol-carbamato.

9. Carboxin + Thiram

5.6-dihidro-2-metil-1.4-oxatin-3-

(Vitavax-200 37.5% w)

carboxanilida ---20% y thiram-tetrametil-tiuram- bisulfuro ---- 20%.

10. Carbendazim (Derosal 60 w)

2-(metoxicarbonilamino)- benzimidazol.

11. Kasugamicina (Kasumin 2 w)

(5-amino-2-metil-6-(2.3.4.5.6-pentahidroxi ciclo- hexiloxi) piran 3-yl) amino--ácido iminoacético.

12. Tiabendazol (Tecto 60 w)

2-(4-tiazolil)-benzimidazol.

13. Testigo con acetona.

-

14. Testigo sin acetona.

-

(*) Probados contra el hongo a 1.10.100.1.000 y 10.000 ppm en medio de PDA.

Tubos de ensayos conteniendo 15ml de PDA fueron esterilizados en autoclave por 30 min a 15 lbs y 121 oC, colocándose en baño de María a 45 oC para mantenerlos en estado líquido y mezclar el fungicida a razón de 1ml por tubo, agitando suavemente para homogeneizarlo, vaciando y sembrando un esclerocio por caja Petri. Esta operación se realizó en condiciones de asepsia en cámara de aislamiento con flujo laminar de aire estéril. Todas las concentraciones de fungicidas tuvieron 5 repeticiones y las cajas fueron mantenidas en condiciones de laboratorio a 27 - 2 oC.

También se utilizó para cada concentración, la prueba de la mínima diferencia significativa (LSD), dónde se comparó las medias de la rata de crecimiento de los tratamientos contra los testigos con y sin acetona.

Fase de umbráculo.

La mezcla utilizada para inocular las plantas de tomate, se preparó usando harina de maíz y arena en proporción 1:1, incorporándole 500 esclerocios que se dejaron crecer durante 7 días. A este preparado se agregó tierra estéril en relación 7:1, conservándose por 3 a 5 días. Transcurrido ese lapso se sembraron dos plantas de 30 días de germinadas en bolsas que contenían 250 g del compuesto, resultando 10 plantas por tratamiento. El número de plantas sanas y enfermas se contó a los 30 días de establecido el ensayo. La prueba no paramétrica "Q de Cochran" reveló diferencias significativas para ambas concentraciones. El material fue tratado con Vitavax en dos concentraciones (10.000 y 1.000 ppm), como sigue:

T1: plantas inoculadas y tratadas simultáneamente.

T2: plantas inoculadas y tratadas a los 10 días .

T3: plantas inoculadas y tratadas a los 20 días.

T4: testigo positivo (inoculado sin tratamiento).

T5: testigo negativo (sin inocular ni tratar).

Resultados y discusión

Fase de laboratorio.

El producto más efectivo fue Vitavax-200 por que inhibió el desarrollo del hongo permitiendo solamente un ligero crecimiento de 0.50 a 0.80 cm en concentraciones de 1 y 10 ppm (Cuadros 2 y 4). Además, tampoco hubo formación de esclerocios en ninguna de las concentraciones empleadas (Cuadros 3 y 5).

Cuadro 2. Experimento 1. Efecto de los fungicidad sobre el desarrollo micelial (cm) del hongo S. rolfsii.

-

Concentración en ppm+

FUNGICIDAD

10.000

1.000

100

10

1

Vinclozolina

0.98

**

1.16

**

1.71

ns

1.98

ns

2.04

ns

Iprodione

0.82

**

0.68

**

1.70

ns

1.83

ns

1.98

ns

Oxicloruro de C

1.82

ns

1.98

ns

2.10

ns

2.21

ns

2.31

ns

Benomil

1.19

**

1.84

ns

1.98

ns

2.18

ns

2.24

ns

Clorotalonil

1.17

**

1.38

*

1.78

ns

1.86

ns

2.21

ns

Captan

1.30

**

1.94

ns

2.05

ns

2.45

ns

2.50

ns

Tiabendazol

2.17

ns

3.87

ns

3.95

ns

4.31

ns

4.45

ns

Carboxin + Thiram

0.00

**

0.00

**

0.00

**

0.50

**

0.52

**

Carbendazim

1.30

**

1.45

*

2.03

ns

2.19

ns

2.28

ns

Kasugamicina

0.74

**

1.50

*

1.95

ns

1.98

ns

2.01

ns

Metalaxil

0.00

**

0.00

**

3.98

ns

3.90

ns

4.30

ns

Test c. acetona

2.20

-

2.21

-

2.24

-

2.21

-

2.23

-

Test s. acetona

2.24

-

2.24

-

2.24

-

2.24

-

2.24

-

L.S.D - 0.05

0.47

-

0.65

-

0.63

-

0.62

-

0.66

-

L.S.D - 0.01

0.67

-

0.92

-

0.89

-

0.87

-

0.93

-

**: Significativo al 1% *: Significativo al 5 % ns: no significativo

Cuadro 3. Experimento 1. Efecto de los fungicidad sobre el número de esclerocios del hongo S. rolfsii.

-
Concentración en ppm
FUNGICIDAD
10.000
1.000
100
10
1
Vinclozolina
72
**
263
*
281
ns
300
ns
329
ns
Iprodione
50
**
99
**
284
ns
320
ns
340
ns
Oxicloruro de C
297
ns
314
ns
381
ns
373
ns
376
ns
Benomil
170
**
198
**
215
**
230
**
245
**
Clorotalonil
130
**
274
ns
311
ns
328
ns
355
ns
Captan
65
**
202
**
208
**
245
**
269
*
Tiabendazol
103
**
151
**
152
**
159
**
229
**
Carboxin + Thiram
0.00
**
0.00
**
0.00
**
0.00
**
0.00
**
Carbendazim
210
**
244
*
307
ns
351
ns
379
ns
Kasugamicina
199
**
260
*
329
ns
330
ns
332
ns
Metalaxil
0.00
**
0.00
**
290
ns
291
ns
298
ns
Test c. acetona
349
-
343
-
340
-
334
-
338
-
Test s. acetona
341
-
341
-
341
-
341
-
341
-
L.S.D - 0.05
71.0
-
72.1
-
65.6
-
65.8
-
66.0
-
L.S.D - 0.01
99.9
-
101.4
-
92.3
-
93.4
-
92.8
-

**: Significativo al 1% *: Significativo al 5 % ns: no significativo

Cuadro 4. Experimento 2. Efecto de los fungicidad sobre la rata de crecimiento (cm) del hongo S. rolfsii.

-
Concentración en ppm
FUNGICIDAD
10.000
1.000
100
10
1
Vinclozolina
1.07
**
1.31
**
1.83
ns
1.98
ns
2.09
ns
PCNB
0.00
**
0.45
**
0.60
**
1.36
**
2.20
ns
Iprodione
0.90
**
0.73
**
1.84
ns
1.97
ns
2.34
ns
Oxicloruro de C
1.91
ns
2.06
ns
2.21
ns
2.32
ns
2.43
ns
Benomil
1.24
**
1.93
ns
2.05
ns
2.27
ns
2.31
ns
Clorotalonil
1.26
**
1.44
**
1.85
ns
1.97
ns
2.35
ns
Captan
1.39
**
2.03
ns
2.15
ns
2.51
ns
2.68
ns
Tiabendazol
2.22
ns
3.93
ns
4.09
ns
4.38
ns
4.51
ns
Carboxin + Thiram
0.00
**
0.00
**
0.00
**
0.61
**
0.80
**
Carbendazim
1.37
**
1.55
*
2.12
ns
2.25
ns
2.39
ns
Kasugamicina
0.86
**
1.77
ns
2.04
ns
2.13
ns
2.20
ns
Metalaxil
0.00
**
0.00
**
2.72
ns
3.09
ns
3.45
ns
Test c. acetona
2.27
-
2.33
-
2.73
-
2.40
-
2.45
-
Test s. acetona
2.60
-
2.60
-
2.60
-
2.60
-
2.60
-
L.S.D - 0.05
0.46
-
0.63
-
0.57
-
0.51
-
0.49
-
L.S.D - 0.01
0.64
-
0.88
-
0.80
-
0.74
-
0.70
-

**: Significativo al 1% *: Significativo al 5 % ns: no significativo

Cuadro 5. Experimento 2. Efecto de los fungicidad sobre el número de esclerocios del hongo S. rolfsii.

-
Concentración en ppm
FUNGICIDAD
10.000
1.000
100
10
1
Vinclozolina
70
**
268
ns
292
ns
318
ns
329
ns
PCNB
0.00
**
0.00
**
0.00
**
119
**
201
**
Iprodione
38
**
89
**
290
ns
337
ns
352
ns
Oxicloruro de C
300
ns
322
ns
338
ns
379
ns
399
ns
Benomil
198
**
305
ns
328
ns
341
ns
375
ns
Clorotalonil
34
**
254
ns
248
ns
298
ns
320
ns
Captan
70
**
218
*
298
ns
301
ns
326
ns
Tiabendazol
110
**
160
**
165
**
180
**
235
**
Carboxin + Thiram
0.00
**
0.00
**
0.00
**
0.00
**
0.00
**
Carbendazim
215
**
238
ns
284
ns
342
ns
358
ns
Kasugamicina
205
**
251
ns
338
ns
341
ns
352
ns
Metalaxil
0.00
**
0.00
**
2.72
ns
3.09
ns
3.98
ns
Test c. acetona
321
-
298
-
308
-
312
-
323
-
Test s. acetona
340
-
340
-
340
-
340
-
340
-
L.S.D - 0.05
68.7
-
73.1
-
69.9
-
65.3
-
64.7
-
L.S.D - 0.01
96.2
-
101.8
-
97.7
-
91.1
-
90.3
-

**: Significativo al 1% *: Significativo al 5 % ns: no significativo

Los fungicidas Metalaxil y PCNB, a concentraciones de 10.000 y 1.000 ppm, tuvieron un comportamiento similar a Vitavax en relación al crecimiento y número de esclerocios formados por el patógeno (Fig. 1); estos resultados son semejantes a los obtenidos por otros autores (1.2.3.4). También se observó a bajas concentraciones que el medio con Metalaxil permitió mayor crecimiento micelial y hubo mas esclerocios que en PCNB; ocurriendo lo contrario con Vitavax, el cual no indujo formación de esclerocios a esas concentraciones.

Los tratamientos con Benomil, Clorotalonil, Iprodione y Kasugamicina a pesar de no existir significancia en la mayoría de las concentraciones para rata de crecimiento, los valores en todo momento se mantuvieron después del testigo; siendo a elevadas concentraciones también inferior la formación de esclerocios, revelando diferencias altamente significativas. Para conocer cuales de esos fungicidas presentaban el mismo grado de efectividad, en relación con la media del ensayo, se empleó la prueba de Duncan; observándose que los grupos se hacen menos numerosos a medida que las concentraciones son mas elevadas (Figs. 2 y 3). El fungicida Cobrex exhibió los peores resultados porque estimuló la producción de esclerocios y no influyó sobre el crecimiento micelial.

En relación con la producción de esclerocios a los 7, 15 y 21 días (Cuadro 6), se confirmó que Vitavax y PCNB fueron los productos más efectivos porque en todas las concentraciones presentaron diferencias altamente significativas con respecto al testigo. Es importante señalar que durante los primeros 7 días hay una considerable formación de esclerocios con tendencia a decrecer a medida que transcurre el tiempo. En la Fig. 4, de acuerdo con la prueba LSD, se observa como el número de tratamientos significativos se van reduciendo a medida que las concentraciones son menores. También se pudo comprobar al comparar los datos de ambos experimentos que los testigos con y sin acetona en términos generales mostraron un comportamiento similar, lo cual revela que ellos no afectan de manera significativa el desarrollo del hongo. Los fungicidas Vinclozolina e Iprodione presentaron, a elevadas concentraciones, significancia para rata de crecimiento y número de esclerocios con respecto al testigo.

Cuadro 6: Efecto de cinco concentraciones de distintos fungicidas sobre la producción (número) de esclerocios. Evaluados durante 21 días testigo con acetona (T1)

-
10.000PPM
1000PPM
100PPM
10PPM
1PPM
Fungicida
7dds
15dds
21dds
7dds
15dds
21dds
7dds
15dds
21dds
7dds
15dds
21dds
7dds
15dds
21dds
Ronilán
70**
128**
142**
268ns
315ns
350ns
292ns
321ns
361ns
318ns
350ns
372ns
329ns
386ns
392ns
Rovral
38**
55**
87**
89**
176**
198**
290ns
323ns
363ns
337ns
359ns
370ns
352ns
70ns
475ns
Ridomil
00**
00**
83**
00**
195**
290**
280ns
387ns
396ns
298ns
365ns
398ns
302ns
372ns
409ns
Deconil
34**
125**
239**
254ns
292ns
315ns
248ns
273ns
320ns
298ns
312ns
386ns
320ns
389ns
422ns
Terraclor
00**
00**
00**
00**
00**
00**
00**
44**
96**
119**
198**
207**
201**
289**
298**
Cobrex
300ns
384ns
461ns
322ns
358ns
482ns
338ns
342ns
432ns
379ns
398ns
459ns
399ns
403ns
478ns
Captan
70**
125**
145**
218ns
282ns
354ns
298ns
307ns
386ns
301ns
358ns
420ns
326ns
387ns
456ns
Benlate
198**
210**
220**
305ns
327ns
390ns
328ns
390ns
478ns
341ns
353ns
420ns
375ns
378ns
415ns
Vitavax-200
00**
00**
00**
00**
00**
00**
00**
00**
00**
00**
00**
00**
00**
00**
00**
Derosal
215**
231ns
290**
238ns
262ns
315ns
284ns
301ns
368ns
342ns
384ns
420ns
358ns
398ns
450ns
Kasumin
205**
230**
320ns
251ns
283ns
330ns
338ns
365ns
397ns
341ns
369ns
388ns
352ns
378ns
422ns
Test con acetona
321
345
398
298
337
409
308
320
397
312
359
415
323
392
433
Media
120.9
171.3
220.8
199.6
247.8
301.4
258.1
289.8
344.6
287.7
323.1
364.6
306.8
349.0
395.0
DesviaciónStand.
119.6
141.9
163.4
130.0
125.1
154.0
118.0
124.8
140.7
106.6
109.5
127.5
103.4
108.7
128.2
L.S.D.0.01
100.0
118.6
136.4
108.7
104.5
128.6
98.4
104.2
117.4
100.0
118.6
136.4
108.7
104.5
128.6
L.S.D.0.05
71.7
85.1
97.8
78.0
74.9
92.2
70.6
74.7
84.2
71.1
85.1
97.8
78.0
74.9
92.2

**: Significativo al 1%
*: Significativo al 5%
ns: no significativo
L.S.D.: Mínima Diferencia Significativa en cada concentración a los días especificados entre tratamientos.

Fase de invernadero.

En el Cuadro 7, cuando se aplicó T1 y T5 las plantas permanecieron sanas, correspondiendo T1 al material inoculado y tratado simultáneamente y T5 al testigo negativo sin inocular ni tratar. En tal sentido, Sitterly y Young (6.7) trabajando con este cultivo obtuvieron resultados satisfactorios aplicando nitrato de calcio y PCNB en bandas al momento del trasplante, encontrando que el cultivo responde adecuadamente cuando es protegido con un producto efectivo, inmediatamente después de la siembra.

Cuadro 7. Resultado de la inoculación de plantas de tomate con el hongo S rolfsii y tratadas con Carboxin + Thiram 1

Tratamiento
Plantas sanas (vivas)
Planta s enfermas (muertas)
T1 A2
10
0
B3
10
0
T2 A
10
0
B
8
2
T3 A
3
7
B
1
9
T4
0
10
T5
10
0

1Q de Cochran calculado: 24.8** a 10.000 ppm
1Q de Cochran calculado: 14.0** a 1.000 ppm
2A. Concentración de 10.000 ppm
3B: Concentración de 1.000 pmm

El T2, inoculado y tratado a los 10 días, presentó un gran número de plantas sanas porque el tiempo de exposición del material con el inoculo fue relativamente corto para iniciarse la infestación del tejido. En T3 y T4, expuestos al hongo durante 20 días y el testigo inoculado sin tratamiento, la mayoría de las plantas murieron, mostrando la virulencia del patógeno cuando es expuesto largos períodos con el huésped. Esto aconseja realizar los tratamientos al observarse los primeros síntomas de la enfermedad ya que el fungicida solo es efectivo cuando aun el hongo no ha colonizado importantes porciones del tejido. De allí que los resultados obtenidos en este trabajo, servirán para orientar a los productores en la selección de los fungicidas más adecuados para favorecer el control del hongo S rolfsii, agente causal de la pudrición blanca del tallo en diversos cultivos.

Conclusiones y recomendaciones

Carboxin + Thiram (Vitavax-200) resultó in vitro y umbráculo, el fungicida mas efectivo para inhibir el crecimiento y la formación de esclerocios del hongo S. rolfsii, causante de la pudrición blanca en tomate y otros cultivos, seguido por PCNB (Terraclor) y Metalaxil (Ridomil).

Los resultados obtenidos sugieren que los fungicidas más promisorios, especialmente Vitavax, deben ser aplicados tan pronto se haga el transplante o cuando se observen los primeros síntomas de la enfermedad. Fungicidas pertenecientes al grupo del cobre, como Cobrex, no deben ser recomendados o aplicados en caso de presentarse algún ataque del hongo, ya que estimulan la producción de esclerocios.

Finalmente, este trabajo proporciona al productor de tomate, maní, girasol, pimentón, ñame, soya, batata, tabaco, melón, ajonjolí y otros cultivos, una alternativa efectiva para el control químico de S. rolfsii; sin embargo el uso de agroquímicos por si solo no es la única opción, por lo tanto deben buscarse medidas que eviten el deterioro del agroecosistema, siendo necesario llevar a cabo estudios que permitan emplear controladores biológicos, así como, continuar las investigaciones que contribuyan a sentar las bases de un control integrado del patógeno.

Literatura citada

  1. Abeygunawardena, D.V.W and R.K.S. Wood. 1957. Effect of certain fungicides on Sclerotium rolfsii in the soil. Phytopathology 47: 607-609.
  2. Diomande, M and M.K. Beute. 1977. Comparison of soil plate fungicide screening and field efficacy in control of Sclerotium rolfsii on peanuts. Plant Disease Reporter 61: 408-412.
  3. Olivos, M.I y R. Mont. 1993. Uso de fungicidas y Trichoderma viridae en el control de Sclerotium rolfsii. Fitopatología. 28 (1): 16-21.
  4. Palazón, I. 1983. Primer curso internacional sobre la protección fitosanitaria en plantaciones frutales, CRIDA, Zaragoza, España. 16p.
  5. Punja, Z.K ; R.G. Grogan and T. Unruh. 1982. Chemical control of Sclerotium rolfsii on golf greens in northern California. Plant Disease 66: 108-111.
  6. Sitterly, W.R. 1962. Calcium nitrate for field control of tomato southern blight in South Carolina. Plant Disease Reporter. 46: 492-494.
  7. Young, P.A. 1960. Controlling southern blight of tomato with chemicals and crop rotation. (Abst.) Phytopathology. 50: 5.